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años continuaremos trabajando en estas líneas de investigación que han resultado tan provechosas. Sin embargo, iniciaremos la apertura de una nueva línea relacionada con el problema fundamental de la evolución molecular con la finalidad de entender mejor los principios físicos que describen la creciente complejidad y diversificación de poblaciones moleculares mutantes. A continuación, se enumeran los objetivos planteados por el grupo:
• Determinación de la termodinámica de ácidos nucleicos a alta resolución.
• Espectroscopia dinámica de fuerzas y métodos de impronta molecular.
• Termodinámica de sistemas pequeños y sistemas fuera del equilibrio.
• Motores moleculares.
• Experimentos de evolución molecular y reconocimiento con técnicas de molécula individual.
Publicaciones científicas más relevantes
• Dieterich E., Camunas-Soler J., Ribezzi-Crivellari M., Seifert U., Ritort F. Control of force through feedback in small driven systems. Physical Review E - Statistical, Nonlinear, and Soft Matter Physics. 2016;94(1).
• Camunas-Soler J., Ribezzi-Crivellari M., Ritort F. Elastic Properties of Nucleic Acids by Single- Molecule Force Spectroscopy. Annual Review of Biophysics. 2016;45:65-84.
• Hodeib S., Raj S., Manosas M., Zhang W., Bagchi D., Ducos B. et al. Single molecule studies of helicases with magnetic tweezers. Methods. 2016;105:3-15.
A destacar
Hemos empezado un nuevo proyecto europeo (H2020-FETOPEN-2014-2015-RIA): Protein sequencing using optical single molecule real-time detection (PROSEQO).
Hemos conseguido un proyecto en la convocatoria 2016 de Proyectos i+D del Programa Estatal de Fomento de la Investigación Científica y Técnica de Excelencias del MINECO. El nombre del proyecto
es Investigaciones de interacciones intermoleculares en ácidos nucleicos, proteínas y fármacos mediante ensayos de molécula única (FIS2016-80458-P).
Hemos abierto una nueva línea de transferencia tecnológica donde construimos instrumentación de pinzas ópticas para grupos de investigación pertenecientes a instituciones públicas y privadas que deseen abrir líneas de caracterización molecular o celular con técnicas de manipulación de molécula o célula única. En este sentido en septiembre de 2016 firmamos un contrato con la Universidad de Padova (Italia) para la construcción de uno de estos instrumentos.
Hemos dado un salto cualitativo en la expansión de nuestras capacidades experimentales a nivel de células individuales. Por un lado, podemos medir las propiedades reológicas de la membrana celular (microreología pasiva). Los resultados obtenidos han servido de punto de partida para una colaboración con el grupo Nanobioengineering (proyecto intramural SPLEEN-RA). Además, podemos medir a tiempo real la deformación de glóbulos rojos aplicando fuerzas controladas, lo cual nos abre la puerta a estudiar no solo las propiedades reológicas de la membrana sino la interacción del citoesqueleto con dicha membrana. Además, en el 2016 dimos los primeros pasos para poder usar nuestras pinzas ópticas en células adheridas a un sustrato tratando de mimetizar la situación in vivo de dichas células.
Hemos aplicado la técnica de single molecule footprinting desarrollada en 2015 para el estudio de interacción de moléculas pequeñas a ADN (Netropsin y dendrímeros). Los resultados obtenidos han permitido empezar una colaboración con el grupo Dendrimer Group for Biomedical Applications (proyecto intramural SINDERNA).
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